大腸桿菌感受態(tài)細胞的制備及質(zhì)粒轉(zhuǎn)化
一、實驗?zāi)康?/span>
通過本實驗，掌握大腸桿菌感受態(tài)細胞的制備及轉(zhuǎn)化的方法和技術(shù)。獲得感受態(tài)細胞；制備含有目的片段的陽性克隆。
二、實驗原理
轉(zhuǎn)化(Transformation)是將外源DNA分子引入受體細胞，使之獲得新的遺傳性狀的一種手段，它是微生物遺傳、分子遺傳、基因工程等研究領(lǐng)域的基本實驗技術(shù)。
轉(zhuǎn)化過程所用的受體細胞一般是限制修飾系統(tǒng)缺陷的變異株，即不含限制性內(nèi)切酶和甲基化酶的突變體(Rˉ，Mˉ)，它可以容忍外源DNA分子進入體內(nèi)并穩(wěn)定地遺傳給后代。受體細胞經(jīng)過一些特殊方法(如電擊法，CaCl2，RbCl (KCl) 等化學(xué)試劑法的處理后，細胞膜的通透性發(fā)生了暫時性的改變，成為能允許外源DNA分子進入的感受態(tài)細胞 (Compenent cells)。進入受體細胞的DNA分子通過復(fù)制，表達實現(xiàn)遺傳信息的轉(zhuǎn)移，使受體細胞出現(xiàn)新的遺傳性狀。將經(jīng)過轉(zhuǎn)化后的細胞在篩選培養(yǎng)基中培養(yǎng)，即可篩選出轉(zhuǎn)化子(Transformant，即帶有異源DNA分子的受體細胞)。CaCl2 法簡便易行，且其轉(zhuǎn)化效率全可以滿足一般實驗的要求，制備出的感受態(tài)細胞暫時不用時，可加入占總體積15％的無菌甘油于-70℃保存(半年)，因此CaCl2法使用更廣泛。
轉(zhuǎn)化率的計算：
統(tǒng)計培養(yǎng)皿中的轉(zhuǎn)化子數(shù)，轉(zhuǎn)化后在抗生素的平板上長出的菌落即為轉(zhuǎn)化子。
轉(zhuǎn)化子總數(shù)=菌落數(shù)×稀釋倍數(shù)（轉(zhuǎn)化反應(yīng)原液總體積 / 涂板菌液體積）
轉(zhuǎn)化頻率（轉(zhuǎn)化子個數(shù)/每μg質(zhì)粒DNA）= 對照2轉(zhuǎn)化子總數(shù) / 質(zhì)粒DNA加入量（μg）
感受態(tài)細胞總數(shù)= 對照1菌落數(shù)×稀釋倍數(shù)
感受態(tài)細胞轉(zhuǎn)化效率= 轉(zhuǎn)化子總數(shù) / 感受態(tài)細胞總數(shù)
為了提高轉(zhuǎn)化效率，實驗中要考慮以下幾個重要因素：
1. 細胞生長狀態(tài)和密度: 不要用經(jīng)過多次轉(zhuǎn)接或儲于４℃的培養(yǎng)菌，最好從-70℃或-20℃甘油保存的菌種中直接轉(zhuǎn)接用于制備感受態(tài)細胞的菌液。細胞生長密度以剛進入對數(shù)生長期時為好，可通過監(jiān)測培養(yǎng)液的OD600 來控制。密度過高或不足均會影響轉(zhuǎn)化效率。
2. 質(zhì)粒的質(zhì)量和濃度: 用于轉(zhuǎn)化的質(zhì)粒DNA應(yīng)主要是超螺旋態(tài)DNA(cccDNA)。轉(zhuǎn)化效率與外源DNA的濃度在一定范圍內(nèi)成正比，但當(dāng)加入的外源DNA的量過多或體積過大時，轉(zhuǎn)化效率就會降低。1ng的cccDNA即可使50μL的感受態(tài)細胞達到飽和。一般情況下，DNA溶液的體積不應(yīng)超過感受態(tài)細胞體積的5％。
3. 試劑的質(zhì)量: 所用的試劑，如CaCl2 等均需是最高純度的(GR.或AR.)，并用超純水配制，最好分裝保存于干燥的冷暗處。
4. 防止雜菌和雜DNA的污染：整個操作過程均應(yīng)在無菌條件下進行，所用器皿，如離心管，tip頭等最好是新的，并經(jīng)高壓滅菌處理，所有的試劑都要滅菌，且注意防止被其它試劑、DNA酶或雜DNA所污染，否則均會影響轉(zhuǎn)化效率或雜DNA的轉(zhuǎn)入，為以后的篩選、鑒定帶來不必要的麻煩。
本實驗以E.coli TOP-10菌株為受體細胞，并用CaCl2處理，使其處于感受態(tài)，然后與pUC質(zhì)粒共保溫，實現(xiàn)轉(zhuǎn)化。由于pUC質(zhì)粒帶有氨芐青霉素抗性基因 (Ampr)，可通過Amp抗性來篩選轉(zhuǎn)化子。如受體細胞沒有轉(zhuǎn)入pUC，則在含Amp的培養(yǎng)基上不能生長。能在Amp培養(yǎng)基上生長的受體細胞（轉(zhuǎn)化子）已導(dǎo)入了pUC。
三、主要試劑
E.coli(Top-10, DH 5a)、CaCl2、無菌水、胰蛋白胨、酵母粉、瓊脂、氨芐青霉素。
四、儀器耗材
控溫搖床(37℃)、冷凍離心機（50mL轉(zhuǎn)子）、水浴鍋、冰箱（-20℃，-70℃）、超凈工作臺、培養(yǎng)箱(37℃)、分光光度計、移液器、槍頭、離心管、小三角瓶、6cm平皿、酒精燈、三角玻棒、酒精棉球、火柴
五、實驗步驟
感受態(tài)細胞制備：
1. 第一天：從大腸桿菌平板上挑取一個單菌落接于2 mL LB液體培養(yǎng)基的試管中，37℃振蕩培養(yǎng)過夜。
2. 第二天：取0.5 mL菌液轉(zhuǎn)接到一個含有50 mL LB液體培養(yǎng)基錐形瓶中，37℃振蕩培養(yǎng)。2-3 h，測定OD600 ≤ 0.4-0.5，細胞數(shù)務(wù)必 ≤108／mL。（此為實驗成功的關(guān)鍵)
3. 將菌液轉(zhuǎn)移到50 mL離心管中，冰上放置10 min。
4. 離心10 min，4000r/min，4℃，倒出培養(yǎng)液，將管倒置1min以便培養(yǎng)液流盡，回收細胞。
5. 用冰冷的0.1 mol/L CaCl2 10 mL懸浮沉淀，立即放在冰上30 min。
6. 4℃ 6000 r/min，離心10 min，回收細胞。
7. 用冰冷的0.1mol/L CaCl2 2 mL懸浮細胞，務(wù)必放在冰上。此細胞為感受態(tài)細胞。
8. 分裝，每管200 μL。可以加入15%甘油-70度保存。
轉(zhuǎn)化：
9. 取200 μL新鮮制備的感受態(tài)細胞，加入連接產(chǎn)物10μL（~50 ng ）混勻冰上放置30 min。
同時作2個對照管：
對照1：200 μL感受態(tài)細胞＋ 10μL無菌水（不含氨芐皿）每班做一個
對照2：200 μL 感受態(tài)細胞＋ 1μL 標準質(zhì)粒DNA溶液（10ng/μL）每班做1-3個
10. 將管放到42℃循環(huán)水浴90-120sec。
11. 冰浴2 min。（提前準備好）
12. 每管加600 μL LB液體培養(yǎng)基，37℃培養(yǎng)1 h（慢搖）。
13. 將適當(dāng)體積已轉(zhuǎn)化的感受態(tài)細胞，離心后涂在含有氨芐青霉素的培養(yǎng)皿中。（提前倒好平板）
注意：對照1涂不加氨芐的平皿，菌液不離心，取1-10μL涂；
對照2涂氨芐平皿，菌液不離心，取5-20μL涂。
14. 倒置平皿37℃培養(yǎng)12-16 h，出現(xiàn)菌落。
15. 計算陽性對照的轉(zhuǎn)化頻率。
16. 記錄樣品的轉(zhuǎn)化子總數(shù)。
六、注意事項
1. 無菌操作。
2. 低溫操作。
3．注意加Amp時的溫度，溫度不能過高（55-60度），否則抗生素失活，會使克隆株無法篩選出來。
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